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Science:三个基因的联合突变会导致致命性心脏病发生

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2019年6月1日 讯 /基因宝jiyinbao.com/ –高达1%的婴儿会受到先天性心脏病的影响,受影响的婴儿可能需要多次手术,终身服药或心脏移植手术等治疗。在许多患者中,先天性心脏病的确切原因尚不清楚。虽然越来越清楚这些心脏缺陷可能是由基因突变引起的,但尚不清楚哪些基因参与其中以及它们如何相互作用。

人类基因组项目允许科学家识别由单个基因的严重突变引起的一些罕见疾病病例,但科学家们认为,更常见的疾病形式可能是多种微妙的基因突变相结合的结果。然而,直到现在,这种人类疾病概念的实验证据仍然难以捉摸。

在5月31日发表在《Science》杂志上的一篇论文中,科学家证明,在一个家庭中遗传的三个微妙遗传变异,导致多个兄弟姐妹在很小的时候患心脏病。

Science:三个基因的联合突变会导致致命性心脏病发生
(图片来源:Lauren Bayless, Gladstone Institutes)

“鉴于儿童疾病的严重程度以及其中一位父母患有无症状的这一事实,我们怀疑儿童的病情是由母亲和父亲的基因组合引起的,”作者说道。

为了验证这一理论,研究人员对该家族的基因组进行了测序,发现父亲在两个基因MKL2和MYH7中发生了突变,使他处于患心脏病的风险中。在我们的基因组中通常有两个拷贝的每个基因,在这种情况下,只有一个拷贝的MKL2和MYH7被突变,导致数百个氨基酸中只有一个发生变化。这三个孩子不仅从父亲那里继承了这两种突变,而且还从母亲那里继承了第三个突变——NKX2-5基因的突变。这种突变也只影响了一种氨基酸,并且在没有心脏病的一般人群中有报道。但是孩子们还共享了许多其他共同的遗传变异,所以是否只改变这三个基因的一个拷贝足以引起疾病的发生仍然是一个悬而未决的问题。

使用CRISPR基因组编辑,作者在小鼠的每个基因的一个拷贝上创建了完全相同的突变。只携带父亲的两个变种或母亲变种的一个副本的小鼠没有表现出任何心脏病的迹象。值得注意的是,具有所有三种变体的小鼠显示出模仿儿童中观察到的心脏缺陷。与人类疾病类似,不仅损害了心脏的结构和功能,而且还改变了心脏和冠状动脉血管发育所必需的数百种其他基因的表达。

“我们的研究结果表明,遗传自母亲的基因加剧了父亲基因引起的问题,导致儿童患心脏病的形式更为严重,”作者说道。在最后一步中,研究人员从每个家庭成员中产生诱导多能干细胞,然后将干细胞转变为心脏跳动细胞。携带所有三种突变的儿童细胞显示出疾病的迹象,而父母的细胞却没有。

“这项工作最终提供了一个实验证据,证明修饰基因如何起作用以影响人类的疾病过程,以及多个基因如何协同工作以引起人类疾病。它指出了一种方法,你可以根据它与之相结合的方式在基因中做出更好或更差的突变。这一发现为识别疾病的遗传修饰因子并将其用作开发新疗法的靶标打开了大门。”(生物谷Bioon.com)

资讯出处:Combination of three gene mutations results in deadly human heart disease

原始出处:C.A. Gifford el al., “Oligogenic inheritance of a human heart disease involving a genetic modifier,” Science (2019). science.sciencemag.org/cgi/doi … 1126/science.aat5056

CRISPR编辑系统升级 利用“跳跃基因”精确插入DNA片段

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CRISPR编辑系统升级 利用“跳跃基因”精确插入DNA片段

 

顶尖学术期刊《科学》最新上线发表的一篇论文中,Broad研究所、麻省理工学院McGovern脑研究所的张锋教授与其同事带来了一款全新的CRISPR基因编辑工具,利用“跳跃基因”,让DNA片段插入基因组变得更加容易。大肠杆菌中的实验结果显示成功率达到80%,远高于经典CRISPR系统。

革命性的基因编辑工具CRISPR/Cas系统实现了在基因组特定位点进行精准编辑。不过,以经典的CRISPR/Cas9为例,从基因组中删除DNA片段相对容易,要用另一段序列替换原有DNA片段则困难得多。原因在于,“基因剪刀”Cas9把DNA切断后,DNA双链通过内源损伤修复通路自然愈合,新DNA片段的整合依靠同源重组或非同源末端连接来实现,效率低,而且在很多细胞类型中不起作用。

此次,张锋教授团队新开发的升级版CRISPR编辑系统在靶向插入DNA这方面做出了突破。用“改正”的DNA序列来取代含有致病突变的序列,将为治疗某些遗传疾病提供极大的帮助。

之所以新的CRISPR升级版本可以让插入DNA变得更容易,关键在于首创性地利用了“跳跃基因”。顾名思义,这类DNA片段在基因组中有移动能力。跳跃基因又叫转座子,可以利用编码的转座酶将自己从原来的位置切割出来,并“跳跃”到基因组的其他位置插入进去。

通常情况下,跳跃基因在细胞内既有可能帮助修复突变,也可能引起有害突变。而CRISPR研究人员想要做的是引导和控制转座子的跳跃,使之插入到基因组的特定位置,避免破坏DNA。

研究团队从蓝藻Scytonema hofmanni中获得一种转座酶,它的3个亚基与一种CRISPR效应蛋白Cas12k相关联。他们将这一系统命名为CAST,即CRISPR相关转座酶(CRISPR-associated transposase)。

CAST系统利用Cas12k在基因组中搜寻特定的序列位点,Cas12k没有活性核酸内切酶功能,与DNA只结合不剪切,而是由转座酶将基因片段直接插入靶位点。不涉及同源重组途径,也让这种方法具有安全性上的优势。

研究团队在大肠杆菌中测试了重编程CAST系统的DNA插入结果,效率非常惊人:经过PCR确认,在基因组目标位点有2.5kb长度的插入产物,并且插入成功率达到80%。相比之下,利用经典CRISPR,这个比例只有1%左右。

不过目前CAST目前同样存在脱靶的危险,将DNA插入到一些不该插入的地方。目标编辑与非目标编辑的比例为99:1。是否一个脱靶DNA的改变就足以致病,比如说破坏一个关键的抑癌基因,这类潜在问题还需要更多的研究来证明。

研究者下一阶段将在更复杂的模式生物中检测这一新系统。尽管还没有在细菌以外进行测试,但CAST为更高效的新一代基因编辑系统带来希望。

正因为如此,这项工作引起了很多科学家的关注。俄勒冈健康与科学大学(Oregon Health and Science University)的生殖生物学家Shoukhrat Mitalipov教授表示,这种新技术有可能用于通过基因组编辑来治疗疾病,“因为它看起来(比经典的CRISPR)更高效、更精确。虽然只是第一步,已经非常令人鼓舞。”(生物谷Bioon.com)

 

人类机体或是携带不同基因组充满突变的“镶嵌复合体”

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2019年6月25日 讯 /生物谷BIOON/ –根据对29种不同组织类型进行全面调查分析后,研究者发现,人体是一个由携带不同基因组的细胞簇组成的镶嵌复合体(complex mosaic),这是迄今为止研究人员进行的此类规模最大的研究,他们对收集自大约500名个体机体的样本进行分析,相关研究结果于6月6日刊登在了国际杂志Science上,或有望帮助科学家们理解癌症发生的机制以及如何更早对检测发现癌症。

人类机体或是携带不同基因组充满突变的“镶嵌复合体”

图片来源:Science Photo Library

来自桑格研究院的科学家Inigo Martincorena表示,如今我们都意识到了实际上人类就是一个“镶嵌复合体”,我们机体大量细胞中都携带有致癌突变,而这些突变或许就是癌症发生的种子,当细胞开始积累突变时组织镶嵌就会出现,在细胞分裂过程中会缓慢发生DNA突变,或者暴露于诸如紫外线或烟草等环境因素都会引发突变积累,当携带既定突变的皮肤细胞开始分裂时,其就会在机体中产生与附近皮肤在遗传特性上并不相同的皮肤斑块。

此前研究结果发现,皮肤、食道和血液中都存在高水平的镶嵌现象,这些结果通常是研究人员对在显微组织样本进行对特性基因进行测序所获得的。

复杂的模式

这些研究引起了麻省总医院计算生物学家Gad Getz博士的关注,因此他及其同事就想采取一种不同的方法进行研究,他们通过深挖来自基因型-组织表达计划(GTEx project)中的RNA测序数据库,而不是对样本进行DNA的测序研究,由于人类机体能利用DNA作为模板来转录RNA序列,而有时候DNA的突变会反映在RNA中。

研究者Getz对来自大约500名个体29份组织中的6700份样本进行分析获得了相应的数据,但其方法也存在一定缺陷,并非所有的DNA都会编码RNA,因此并非每一种DNA突变都会在RNA序列中显现出来,而且由于GTEx计划中的样本量相对较大,携带特殊基因组的小型细胞簇中的DNA特征可能就会被更大数量的其它细胞所淹没。

总体而言,这项研究发现,某些类型组织中镶嵌现象的数量要少于研究者此前的预期,但研究者指出,这项最新研究表明,镶嵌现象或许存在于多种组织中。具有高细胞分裂率的组织(比如组成皮肤和食管的组织等)更倾向于比低细胞分裂率的组织具有更多的镶嵌性,而且镶嵌现象也会随着年龄的增加而增加,尤其在肺部和皮肤组织中普遍存在,这些组织经常会暴露于损伤DNA的环境因子中。

人类机体或是携带不同基因组充满突变的“镶嵌复合体”

图片来源:statnews.com

细微的信号

名为TP53的基因能帮助修复细胞中DNA的损伤,其被认为是基因组的“守护者”,然而该基因是一个最常见的突变位点,TP53的特定改变往往与癌症发生有关,但在细胞产生肿瘤之前或许还需要其它基因发生额外的突变。来自加拿大的癌症基因组学家Erin Pleasance博士指出,我们早期会看到一些癌前病变,随后其会积累更多突变,最终一小部分突变可能会转变为癌症。

目前研究人员需要找到方法来进行分类确定哪些细胞会发生癌变,哪些细胞是正常细胞,这对于进行癌症的早期诊断及开发新型抗癌疗法至关重要。来自约翰-霍普金斯医疗集团的科学家Cristian Tomasetti开发出了能检测血液中循环肿瘤DNA的方法,他们希望有一天能用来寻找癌症的早期迹象,Tomasetti表示,我们的研究团队起初非常惊讶地发现,其中有些突变与癌症发生相关,而这或许就能够指示癌症的存在,如今很多研究者还需要联合研究来阐明癌症发生的分子机制,并寻找新型的抗癌之法。(生物谷Bioon.com)

参考资料:

【1】Keren Yizhak, Fran?ois Aguet, Jaegil Kim,et al. RNA sequence analysis reveals macroscopic somatic clonal expansion across normal tissuesScience  07 Jun 2019:Vol. 364, Issue 6444, eaaw0726 DOI: 10.1126/science.aaw0726

【2】Martincorena I, Roshan A, Gerstung M, et al. Tumor evolution. High burden and pervasive positive selection of somatic mutations in normal human skin. Science. 2015 May 22;348(6237):880-6. doi: 10.1126/science.aaa6806.

【3】Martincorena I, Fowler JC, Wabik A, et al. Somatic mutant clones colonize the human esophagus with age. Science. 2018 Nov 23;362(6417):911-917. doi: 10.1126/science.aau3879

【4】Genovese G, Kahler AK, Handsaker RE,et al. Clonal hematopoiesis and blood-cancer risk inferred from blood DNA sequence. N Engl J Med. 2014 Dec 25;371(26):2477-87. doi: 10.1056/NEJMoa1409405

【5】Heidi Ledford. The human body is a mosaic of different genomesNature(2019) doi: 10.1038/d41586-019-01780-9

Nat Med:重大进展!等位基因特异性基因编辑有望治疗遗传性耳聋

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2019年7月7日讯/生物谷BIOON/—在一项新的研究中,来自美国哈佛医学院和波士顿儿童医院的研究人员利用一种新的基因编辑方法挽救了患有遗传性听力丧失的小鼠的听力,而且在成功地做到这一点的同时没有产生任何明显的脱靶效应。这些被称为贝多芬小鼠(Beethoven mice)的动物因为具有相同的导致人类进行性听力丧失(progressive hearing loss)并且最终在20岁左右耳聋的基因突变而接受了这种方法的治疗。相关研究结果于2019年7月3日在线发表在Nature Medicine期刊上,论文标题为“Allele-specific gene editing prevents deafness in a model of dominant progressive hearing loss”。

Nat Med:重大进展!等位基因特异性基因编辑有望治疗遗传性耳聋
图片来自CC0 Public Domain。

这种新的方法涉及经典的CRISPR-Cas9基因编辑系统的一种优化的更加精确的版本,能够更好地识别在贝多芬小鼠中发现的这种引起疾病的基因突变。这种精确的工具允许科学家们选择性地让一个称为Tmc1的听力基因的缺陷拷贝失活,同时让它的健康拷贝发挥功能。值得注意的是,这些研究人员报道,他们的系统成功地在小鼠基因组的30亿个碱基中识别出Tmc1基因缺陷拷贝中单个错误的DNA碱基。

这些研究人员提醒说,即使是像这样的高精度基因编辑疗法在可用于人体之前,还有许多研究工作要做。不过,他们说,这项研究代表了一个里程碑,这是因为它极大地提高了标准基因编辑技术的功效和安全性。

哈佛医学院布拉瓦特尼克研究所转化医学科学教授David Corey说道,“我们的研究结果证实目前经典的CRISPR/Cas9编辑工具的这种更精确、靶向性更好的版本实现了前所未有的识别水平和准确性。”

此外,Corey及其团队表示,这些研究结果为使用相同的精确方法治疗由基因的单个缺陷拷贝引起的其他显性遗传的遗传疾病奠定了基础。

每个人都继承了同一个基因的两个拷贝—一个拷贝来自父亲,另一个拷贝来自母亲。在许多情况下,一个正常的基因足以确保正常的功能,让人体免于疾病。相反,在所谓的显性遗传性遗传疾病中,一个基因的单个缺陷拷贝就能够导致疾病。

论文通讯作者、哈佛医学院耳鼻喉科与神经病学教授Jeffrey Holt说道,“我们相信,我们的研究为一种治疗一系列由基因的单个缺陷拷贝引起的遗传疾病的超定向方法打开了一扇大门。这真地是精准医疗。”

携带有缺陷性Tmc1基因的小鼠被称为贝多芬小鼠,这是因为它们的疾病过程模拟了德国著名作曲家路德维希-范-贝多芬所经历的进行性听力损失。不过,贝多芬耳聋的原因仍然是一个猜测的问题。

在贝多芬小鼠中,它们存在的标志性缺陷是Tmc1基因的DNA序列中存在一个不正确的碱基—碱基A替换碱基T,即单个碱基错误表示着正常听力和耳聋之间的差异。

让Tmc1基因的突变拷贝失去功能或沉默足以保护贝多芬小鼠的听力,但是这如何在不会无意中让健康的基因拷贝失去功能的情况下完成呢?


双重识别

经典的CRISPR-Cas9基因编辑系统通过使用向导RNA(gRNA)来识别发生突变的靶DNA序列。一旦确定了靶DNA的位置,切割酶Cas9就会进行切割。

到目前为止,这些基因编辑器的准确度并不完美。这是因为引导酶Cas9到达靶位点的gRNA和切割靶DNA的酶Cas9并不完全精确,最终可能会切割错误的DNA位点。

为了克服这些挑战,这些研究人员采用了对最初由哈佛医学院病理学教授Keith Joung和哈佛医学院病理学助理教授Ben Kleinstiver开发的一种工具进行了改进,其中这种工具使用源自金黄色葡萄球菌的一种经过修饰的Cas9酶,而不是来自酿脓链球菌的标准Cas9。

为了提高检测和破坏的准确性,这种新的优化系统将两个层次的识别结合在一起—gRNA用于确定靶基因的位置和Cas9的一种修饰形式用于精确定位贝多芬小鼠中的特定DNA突变所在的位置。使用这种两种形式的识别可确保精确地和选择性地切割基因Tmc1的异常拷贝,而不影响它的健康拷贝。

论文第一作者Bence Gyorgy说道,“我们利用了这个系统识别突变DNA而非正常DNA的事实,并使用双重识别系统来提高精确度。这种方法在靶向突变基因方面产生了前所未有的特异性。”

在对具有和不具有这种贝多芬突变的细胞开展的一组初始实验中,这种工具准确地区分Tmc1基因的两个拷贝中的突变DNA和正常DNA。进一步分析显示,在含有这个基因的一个缺陷拷贝和一个正常拷贝的贝多芬细胞中,至少99%的分子“切割”仅发生在这个基因的缺陷拷贝中。

接下来,这些研究人员将这种基因编辑工具注射到含有或没有这种贝多芬突变的小鼠内耳中。DNA分析显示编辑活性仅发生在具有贝多芬突变的小鼠的内耳细胞中。在接受这种注射的没有这种突变的小鼠的内耳细胞中没有检测到编辑变化—这一发现证实了这种工具的精确度。

为了确定这种基因编辑疗法是否干扰了正常的基因功能,这些研究人员以没有携带贝多芬突变的小鼠为实验对象,刺激了来自这些接受这种治疗的小鼠的听力细胞(称为毛细胞)。这些细胞显示出不变的正常听力反应,从而证实这种基因编辑疗法对正常基因功能没有影响。


沉默贝多芬突变

为了测量这种基因编辑疗法是否在动物体内而不仅仅是在细胞中起作用,这些研究人员进行了金标准的听力测试。他们测量了这些小鼠的听觉脑干反应,以便捕捉了内耳毛细胞检测到多少声音并传递到大脑中。

如果不进行治疗,贝多芬小鼠通常在6个月大时就完全失聪。相比之下,没有这种遗传缺陷的小鼠在整个生命过程中都能保持正常的听力,并且可以检测到大约30分贝的声音(相当于耳语的声音水平)。

在接受这种基因编辑治疗两个月后,贝多芬小鼠的表现明显好于未治疗的携带这种基因突变的贝多芬小鼠。这些经过治疗的小鼠能够检测到约45分贝的声音(相当于正常谈话的声音水平)。听力保持最大的贝多芬鼠标能够听到25至30分贝的声音,几乎与健康的同龄小鼠无法区分。

总之,这些研究结果证实这种新的基因疗法有效地让Tmc1基因的缺陷拷贝沉默,并挽救了贝多芬小鼠的听力,使得它们免于在这种疾病中经常出现的快速死亡。

鉴于这种疾病以进行性听力丧失为特征,这些研究人员评估了这种治疗在数月内对疾病进展的影响。他们在小鼠出生后不久就提供这种治疗,并且每4周在接受治疗和未接受治疗的携带和未携带这种突变的小鼠中进行听力测试,持续长达6个月。

在第一个月,未经治疗的贝多芬小鼠能够听到低频声音但在高频时听力明显下降。到出生后6个月时,未经治疗的贝多芬小鼠失去了所有的听力。相比之下,经过治疗的贝多芬小鼠在低频时保持接近正常的听力,而且其中的一些甚至在高频率下仍显示接近正常的听力。

值得注意的是,经过治疗的没有携带这种贝多芬突变的小鼠没有因为这种基因治疗而出现任何听力损失—这一发现证实了这种治疗方法的安全性及其选择性靶向这个基因的异常拷贝的能力。更令人鼓舞的是,在接下来近一年的时间里,一小部分经过治疗的贝多芬小鼠保持稳定的接近正常的听力。

鉴于贝多芬突变的特点是内耳中听力细胞的逐渐恶化和死亡,这些研究人员使用电子显微镜可视化观察这些至关重要的听力细胞的结构。正如预期的那样,在未经治疗的贝多芬小鼠中,他们发现听力细胞逐渐丧失,它们的结构也逐渐恶化。相比之下,经过治疗的贝多芬小鼠和经过治疗的健康小鼠都保留了正常数量的具有完整或接近完整结构的听力细胞。

在最后的实验中,这些研究人员在一系列携带贝多芬突变的人体细胞中测试了这种治疗的效果。DNA分析显示这种治疗仅在Tmc1基因的突变拷贝中进行编辑,而正常的拷贝不受影响。

鉴于这种方法能够靶向单点基因突变,它也有望治疗15种其他形式的也由其他听力基因的DNA序列中的单碱基突变引起的遗传性耳聋。

此外,这些研究人员表示,他们的技术可能适用于由单点突变引起的其他显性遗传性遗传疾病。为了确定它的潜在用途,他们扫描了联邦ClinVar数据库—一个与人类疾病相关的所有已知基因突变的国家信息库。分析结果表明基于这种工具的特异性,它能够正确识别3759个缺陷的基因变异,这些基因变异总共导致五分之一的显性人类基因突变。

Holt说道,“毫无疑问,这是万里长征的第一步。但是我们在这项研究中的原理论证表明这种高度特异性、高度靶向的治疗方法经开发出来后能够选择性地抑制携带单点突变的基因,并有可能治疗许多其他形式的人类疾病。”(生物谷 Bioon.com)

参考资料:


Bence György et al. Allele-specific gene editing prevents deafness in a model of dominant progressive hearing loss. Nature Medicine, 2019, doi:10.1038/s41591-019-0500-9.

Neuron:不同关键基因之间的“串扰”或会促进阿尔兹海默病患者的大脑炎症表现

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2019年7月16日 讯 /生物谷BIOON/ –近日,一项刊登在国际杂志Neuron上的研究报告中,来自麻省总医院的研究人员通过研究阐明了如何有效抑制大脑组织的炎症表现,大脑组织的炎症会促进阿尔兹海默病的发生,相关研究结果有望帮助研究人员开发治疗阿尔兹海默病的新型疗法。

Neuron:不同关键基因之间的“串扰”或会促进阿尔兹海默病患者的大脑炎症表现

图片来源:public domain

我们都知道,阿尔兹海默病患者的大脑中充满了受损神经细胞和其它蛋白质(称之为淀粉样蛋白和tau蛋白缠结)的沉积物,但如果仅有淀粉样斑块和tau蛋白缠结的话,一个人或许在很长一段时间内都不会患上阿尔兹海默病;研究者表示,大脑组织应对淀粉样斑块和tau蛋白缠结所产生的炎症(神经炎症)是神经元细胞的主要杀手,其会导致个体大脑认知功能下降。

2008年,研究人员发现了与阿尔兹海默病患者大脑神经炎症相关的第一个基因—CD33,其能够携带编码小胶质细胞表面受体的遗传代码,小胶质细胞能作为大脑的“管家”,有效清除大脑中的神经碎片,包括淀粉样斑块和tau蛋白缠结等;2013年,研究人员发现,CD33能够影响小胶质细胞的活性,当该基因高度表达时,小胶质细胞就会从大脑“管家”的角色转变为神经元杀手,从而诱发神经炎症发生。

此外,研究人员还调查了另外一种名为TREM2的基因,该基因与CD33具有相反的效应,其能够关闭小胶质细胞促进神经炎症的能力;换句话说,CD33是神经炎症的开启开关,而TREM2则扮演关闭开关的角色,该领域研究的重点就是阐明如何关闭小胶质细胞中的神经炎症表现。这项研究中,研究人员就想通过研究阐明CD33如何与TREM2相互作用,以及其二者之间的串扰(crosstalk)在神经炎症的发生及阿尔兹海默病的起源上扮演着什么样的角色,研究者想知道当这些关键的基因被分别和同时关闭后到底会发生什么?

为了回答这个问题,研究人员对在实验室中培育的小鼠进行研究,这些小鼠会发生大脑改变,且行为与阿尔兹海默病患者一致;研究者首先观察并分析了机体中CD33基因被关闭的阿尔兹海默病小鼠,他们发现,这些小鼠大脑中淀粉样斑块的水平下降了,而且在学习和记忆测试中(比如在迷宫中找到出口等)相比其它阿尔兹海默病小鼠而言表现较好;然而,当小鼠机体中CD33和TREM2的表达都被沉默时,其大脑和行为益处都会消失,而且当单一的TREM2基因被抑制时也会出现这种状况。

研究者表示,TREM2在CD33的下游发挥着控制神经炎症的作用,而这一理论得到了小胶质细胞RNA测序结果的支持,这就提示,CD33和TREM2能够通过增加或降低免疫细胞IL-1β及细胞受体IL-1RN的活性来调节神经炎症的发生。最后研究者Tanzi说道,如今我们越来越意识到需要开发出阿尔兹海默病新型疗法,而最关键的是阻断因神经炎症所引发的大量大脑神经细胞的死亡,CD33和TREM2基因或许有望成为未来开发新型药物的潜在靶点。(生物谷Bioon.com)

原始出处:

Ana Griciuc et al, TREM2 Acts Downstream of CD33 in Modulating Microglial Pathology in Alzheimer’s Disease, Neuron (2019). DOI:10.1016/j.neuron.2019.06.010

Nature子刊:利用免疫正交直向同源物有望提高CRISPR-Cas9基因组编辑效率

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2019年8月22日讯/生物谷BIOON/—近年来,进入临床试验的蛋白治疗剂的数量急剧增加。这类治疗剂的一个重要限制是它们可能是宿主适应性免疫系统的靶标。业已存在的免疫力和治疗诱导的免疫应答都能够潜在地降低治疗效果。

鉴于CRISPR-Cas9的功效和高通量能力,它引发了基因组编辑领域的变革。一项利用CRISPR-Cas9介导的基因组编辑的临床试验于今年年初开始,并且还将有更多的临床试验。然而,人们仍然关注Cas9蛋白在人体中的潜在免疫原性,特别是腺相关病毒(AAV)载体介导的Cas9递送在体内的应用。最近,几个独立的研究团队报道了人体对Cas9蛋白的免疫力早已存在。幸运的是,科学家们在自然界中发现了来自不同细菌物种的几种Cas9变体(Cas9的直向同源物)。

Nature子刊:利用免疫正交直向同源物有望提高CRISPR-Cas9基因组编辑效率
图片来自Nature Biomedical Engineering, 2019, doi:10.1038/s41551-019-0431-2。

考虑到这些因素,Moreno及其同事们在一项新的研究中,通过预测Cas9变体和AAV各自的氨基酸序列对主要组织相容性复合物I型(MHCI)和II型(MHCII)的结合能力来分析它们的免疫正交性(immune-orthogonality)。通过使用Cas9和AAV的免疫正交直向同源物(immune-orthogonal ortholog),它们在预先接受Cas9蛋白免疫的动物中实现了高效的基因组编辑。有趣的是,预先免疫仅导致编辑效率的部分降低,这表明抗Cas9适应性免疫应答在体内的影响是有限的。

然而,这项研究的一个重要限制是使用与人类相比具有有限MHC谱系的近交小鼠。这些研究人员承认,鉴于不同AAV衣壳之间的高度保守性和人群中众多MHC免疫基因的存在,使用免疫正交直向同源物可能是降低人类抗衣壳免疫原性的一个较差的解决方案。Cas9在体内的使用可能存在类似的限制。然而,细菌中Cas9的进化具有较长的历史,并且每个月从不同的细菌菌株中分离出新的Cas9变体。降低对Cas9产生适应性免疫应答的风险的另一种可能的解决方案是通过mRNA或蛋白递送实现Cas9核酸酶的瞬时表达。

自然界中存在的Cas9蛋白的免疫正交性似乎提供了一种解决方案来潜在地降低预先存在的和治疗后产生的免疫应答对基因组编辑功效的影响。如果在具有更大MHC谱的动物模型中得到证实,那么这种方法可以允许利用基因组编辑对体细胞进行修饰和在体内校正人类的基因突变。(生物谷 Bioon.com)

参考资料:

1.Ana M. Moreno et al. Immune-orthogonal orthologues of AAV capsids and of Cas9 circumvent the immune response to the administration of gene therapy. Nature Biomedical Engineering, 2019, doi:10.1038/s41551-019-0431-2.

2.Giuseppe Ronzitti. Immune-orthogonal orthologs: The solution for genome editing?. Science Translational Medicine, 2019, doi:10.1126/scitranslmed.aay7701.

Sci Adv:揭示基因和环境影响机体BMI和身高的分子机制

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2019年9月7日 讯 /生物谷BIOON/ –日前,一项刊登在国际杂志Science Advances上的研究报告中,来自昆士兰大学的科学家们通过研究发现,环境因素或会通过增加或降低遗传性基因突变的效应来影响机体的体重指数(BMI)。研究者发现这恰恰与人类身高相反,影响机体身高的遗传效应在不同环境中是非常稳定的。

Sci Adv:揭示基因和环境影响机体BMI和身高的分子机制

图片来源:CC0 Public Domain

相关研究或能帮助确定,对于任何特定的性状,基因变异的效应是否会受到环境因素的影响;研究者Yang表示,诸如身高和BMI等大部分人类机体特征都非常复杂,因为其会受到很多遗传因素及环境因素的影响。目前研究人员并不清楚这些特征的遗传性控制是否依赖于环境因素,DNA的差异会影响机体特征,但在不同环境中这种效应是否处于稳定状态?

比如,我们所熟知的遗传变异会影响肺部功能,那么这种遗传变异的功能是否会因个体吸烟而发生明显改变呢?目前研究人员已经清楚吸烟和肺部功能之间的关联,那么我们并不知道的环境条件到底是什么呢?我们又是如何发现基因变异如何受到环境因素的影响呢?在人类机体中,我们很难测定一个人所暴露的所有可能性的环境因素,因此研究人员决定采用一种不同的方法。

这项研究中,研究人员利用超过30万人的数据进行研究,这些参与者的身高和BMI值等机体复杂特征是已知的,随后研究者搜寻了与每一种特征改变相关的遗传变异,他们发现,即使对于携带相同遗传突变对个体而言,BMI也可能存在着显著差异,但对于身高相关的遗传变异而言,情况或许并非如此。研究者发现了与身高相关的大量遗传因素,其效应似乎对环境因素并不敏感,而与BMI相关的遗传效应及部分其他肥胖相关的特征或许对环境因素非常敏感。身高不仅会受到环境因素的影响,还会受到基因的影响,但这些似乎都是独立的,知晓这一点很重要,因为其能帮助研究人员寻找那些可能干扰基因功能且令人难以捉摸的环境因素。

本文研究结果为研究人员阐明与BMI和身高相关的基因组和环境因素之间的相互作用提供了新的线索,后期研究人员还需要深入研究理解特定基因位点的遗传效应为何会对环境因素变得敏感,阐明背后的分子机制或对后期进行更为深入的医学研究提供了新的线索和思路。(生物谷Bioon.com)

原始出处:

Huanwei Wang, Futao Zhang, Jian Zeng,et al. Genotype-by-environment interactions inferred from genetic effects on phenotypic variability in the UK Biobank, Science Advances (2019). DOI:10.1126/sciadv.aaw3538

Science:基因组图谱揭示多种免疫细胞参与多发性硬化的发生

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2019年9月27日 讯 /基因宝jiyinbao.com/ –根据最近在《Science》杂志上发表的最新研究结果,研究者们找到了多发性硬化的新型致病机制。在一项对115,803名个体的研究中,作者确定了人类基因组中233个位点,这些位点与MS的发病有关。该研究是迄今为止在MS领域中最大规模的,它基于47,429名MS患者和68,374名健康个体的DNA样本。研究结果证实此前的结论,并为多发性硬化发病的分子机制提供了丰富的新见解:似乎外周血和脑中许多不同免疫细胞类型的功能障碍导致一系列免疫反应的发生,最终导致脑部炎症和神经变性。
Science:基因组图谱揭示多种免疫细胞参与多发性硬化的发生
(图片来源:Www.pixabay.com)
该研究的主要研究人员Philip De Jager博士是纽约市哥伦比亚大学欧文医学中心多发性硬化症中心以及转化与计算神经免疫学中心的负责人,他认为:“该研究表明这一疾病并非由单一免疫细胞类型引起,而是由免疫系统广泛功能障碍引起的。”在此之前,研究者们发现骨髓、血液中的免疫细胞对于多发性硬化的发生起着至关重要的作用。此外,小胶质细胞,即人类大脑中的免疫细胞,也被认为与疾病的发生有关。但是,几乎没有证据表明其他大脑细胞(例如大脑中的神经元)与多发性硬化之间的关系。
 
另一参与该研究的研究者,来自哈佛大学的Nikolaos Patsopoulos博士说:“我们的研究解释了多发性硬化的大约一半遗传特征。这项研究通过鉴定基因组中具有多个遗传变异的几个区域,突显了遗传对导致多发性硬化发生的复杂本质。此外,我们首次报道了X染色体上遗传变异与疾病的相关性。然而,要完全理解人类基因组如何参与MS,还有许多工作要做。”(生物谷Bioon.com)
原始出处:Research Article Multiple sclerosis genomic map implicates peripheral immune cells and microglia in susceptibility International Multiple Sclerosis Genetics Consortium. Multiple sclerosis genomic map implicates peripheral immune cells and microglia in susceptibility. Science, 2019 DOI: 10.1126/science.aav7188

中国学者研发无创眼内基因药物递送载体

基因君

 

中国学者研发无创眼内基因药物递送载体

 

慢性眼底疾病是导致人们视力严重受损甚至失明的主要原因。

记者11日获悉,经过近8年攻关,复旦大学药学院魏刚教授研究团队在无创眼内基因药物递送研究领域获重要进展,对治疗致盲性慢性眼底疾病有重要意义。该成果已发表在国际知名学术期刊《纳米快报》(《Nano Letters》)上。

据魏刚介绍,遗传性视网膜病变、视网膜母细胞瘤、老年黄斑变性、糖尿病性视网膜病变等慢性眼底疾病是导致人们视力严重受损甚至失明的主要原因。当下,治疗此类疾病采用的方法是,将获准应用于临床的眼科基因药物,通过眼内注射方法给药。

这位专家表示,但由于基因药物分子量大、亲水性强,眼球的特殊保护机制会自动阻止药物进入,使其无法在眼部吸收,即便是小分子药物,其吸收率也不足5%,且潜在副反应发生率高、眼内炎、视网膜劈裂或脱落患者顺应性差等风险。

为改变这一现状,7年多前,魏刚团队开始了无创给药眼内基因药物递送研究,他们首先设计了一系列用于滴眼给药的基因递送系统。据介绍,在研发过程中,研究团队受到章鱼的启发,成功构建了一种类似章鱼结构的柔性多“手臂”渗透素。这是一种基因复合物,作为递送基因药物的载体,保持对眼部吸收屏障的高效渗透能力。

据悉,与目前广泛使用的市售基因药物载体相比,这种新的基因复合物,安全性优势突出,且制备方法简便、稳定性好,眼部吸收效果更佳,有望成为一种通用的基因递送载体,可有效促进基因治疗技术的临床转化。(生物谷Bioon.com)

Nature:新一代CRISPR基因编辑技术诞生,或为人体细胞提供多种功能

基因君


2019年10月22日 讯 /基因宝jiyinbao.com/ –近日,来自麻省理工学院和哈佛大学Broad 研究所的科学家们通开发了一种新的CRISPR基因组编辑方法,能够进一步提高基因编辑的效率与准确性。

该系统称为“prime编辑”,能够以精确,高效和高度通用的方式直接编辑人体细胞。该方法扩大了生物学和治疗学研究的基因编辑范围,并有可能纠正多达89%的已知致病基因变异。

“分子生命科学的主要宗旨是能够达到在任何位置精确地改变基因组的能力。我们认为这一新开发的基因编辑技术使我们离这一目标更近”,该研究的作者之一David Liu说到。

Nature:新一代CRISPR基因编辑技术诞生,或为人体细胞提供多种功能
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相关结果发表在最近的《Nature》杂志上。该研究第一作者为Andrew Anzalone。

“prime编辑”与以前的基因组编辑系统不同,它使用RNA指导DNA序列的定点插入。

Cas9蛋白是最早在人类细胞中进行基因组编辑的CRISPR工具,它是由Broad研究所,麻省理工学院和哈佛大学率先开发。 Cas9能够切割DNA链,从而可以在特定位置破坏靶基因,然后通过将新的DNA重组到位点而添加新的序列。

最近这项由Liu等人开发的“prime编辑”工具,是在原有CRISPR-Cas9技术的基础上将Cas9进一步融合到另外一个蛋白质上。后者可以进行特殊的生化反应,将一个DNA碱基进行转换。目前开发出的蛋白质可以有效地进行四种类型的碱基转换:C到T,T到C,A到G和G到A。

该编辑系统的另一大特色是将Cas9与另一种称为逆转录酶的蛋白质偶联。该复合物将目标DNA区域的其中一条链变为“prime”链,从而能够定向的进行基因序列编辑。

关于sgRNA,作者使用了一种新型的工程化sgRNA,称为pegRNA,可将“prime编辑”工具引导至其靶位点,在该位点,经过修饰的Cas9会切割DNA的一条链。 pegRNA还包含能够编码新序列的RNA片段。逆转录酶元件通过读取RNA信息并将相应的DNA“写入”靶点区域。

在《自然》杂志的论文中,研究小组证明了主要编辑技术能够通过基因编辑的方式准确纠正导致镰状细胞性贫血的基因变异。

“通过初步编辑,我们现在可以将镰状细胞贫血突变直接改回正常序列,并去除引起泰晤士病的四个额外的DNA碱基,而无需完全切割DNA或需要DNA模板,” Liu说:“该系统的优点在于对编辑的序列几乎没有限制。由于添加的核苷酸由pegRNA指定,因此它们与prime链即使仅仅只有一个碱基的差异,也能够做到准确识别。”

Liu的团队打算继续优化主要编辑,包括最大限度地提高其在许多不同细胞类型中的效率,进一步研究主要编辑对细胞的潜在影响,在疾病的细胞和动物模型中进行额外测试,并探索动物体内的给药途径,以提供潜在的用于人体治疗的途径。(生物谷Bioon.com)

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